Giảm hiệu suất tăng trưởng của tôm sú bị nhiễm IHHNV

Mô phỏng phát triển thương mại củng cố giá trị cho lựa chọn dựa trên sàng lọc IHHNV không có / tôm bố mẹ thấp, sử dụng cổ phiếu SPF và lựa chọn cho khả năng kháng / dung nạp IHHNV

Bởi vì IHHNV có thể làm giảm đáng kể năng suất ao trong tôm sú nuôi ( Penaeus monodon ) và nhiễm trùng cấp tính kéo dài có thể gây biến dạng vỏ nghiêm trọng, điều quan trọng là phải sàng lọc cá bố mẹ và / hoặc các hồ postlarvae có kích thước phù hợp để đảm bảo rằng chỉ có IHHNV- cây giống thấp được nuôi.

Vi rút hoại tử dưới da và nhiễm trùng máu (IHHNV) lần đầu tiên được xác định vào năm 1983 ở châu Mỹ là nguyên nhân gây tử vong hàng loạt của tôm xanh Thái Bình Dương nuôi ( Litopenaeus stylirostris ). Không lâu sau đó, nó cũng được xác định là gây ra dị tật vỏ và tăng trưởng chậm lại được gọi là hội chứng dị tật runt của người Hồi giáo ở tôm thẻ nuôi Thái Bình Dương ( Litopenaeus vannamei ).

Ở Úc và các nơi khác ở Ấn Độ-Thái Bình Dương, IHHNV thường được phát hiện với tỷ lệ cao ở tôm sú hoang dã và nuôi ( Penaeus monodon ). Trong khi nhiễm IHHNV được coi là tương đối lành tính và ít ảnh hưởng đến việc nuôi trồng loài này, nhiễm trùng cấp tính được coi là nguyên nhân gây biến dạng vỏ nghiêm trọng trong một đoàn hệ của P. 3 monodon  được thuần hóa ở Indonesia vào đầu những năm 1990 .

Phát hiện IHHNV dựa trên PCR đã bị phức tạp do biến đổi trình tự bộ gen giữa các chủng của ba dòng đã biết (I, II và III) và bởi các dạng gen IHHNV không nhiễm trùng đã được tích hợp vào DNA nhiễm sắc thể của một số P. monodon  trong quần thể phân tán rộng rãi trên phạm vi phân phối tự nhiên của nó.

Để tránh phát hiện chéo các dạng genome IHHNV tích hợp, các xét nghiệm PCR thông thường và thời gian thực đã được thiết kế để loại trừ sự khuếch đại của chúng hoặc phát hiện cụ thể yếu tố virus nội sinh IHHNV tích hợp trong việc loại trừ các dòng nhiễm IHHNV. Các xét nghiệm PCR định lượng thời gian thực (q) đối với IHHNV cũng cung cấp một phương tiện định lượng chính xác số lượng DNA IHHNV như một thước đo tải lượng nhiễm trùng tương đối.

Bài viết này tóm tắt các kết quả của một nghiên cứu là một thử nghiệm phát triển của hai đoàn hệ P. monodon  khác nhau về tỷ lệ lưu hành và tải IHHNV của chúng từ nhiễm trùng IHHNV tải khác nhau đáng kể giữa các cá bố mẹ cái mà chúng có nguồn gốc. Tôm được nuôi trong điều kiện thương mại mô phỏng trong bốn ao nghiên cứu 0,16 ha. QPCR thời gian thực đã được sử dụng để theo dõi tải IHHNV và tỷ lệ lưu hành giữa các nhóm 48 con tôm được lấy mẫu đều đặn trong khoảng thời gian nuôi từ bốn ao. Những dữ liệu này đã xác định mối liên quan rõ ràng giữa sự khởi đầu của nhiễm IHHNV cấp độ cao và tốc độ tăng trưởng, tỷ lệ sống và thu hoạch giảm đáng kể.

Thiết lập thử nghiệm tăng trưởng

 bố mẹ Penaeus monodon  bị bắt ở vùng nước ven biển gần Bãi biển Bramston ở Bắc Queensland đã được vận chuyển bằng đường hàng không đến Trung tâm nghiên cứu đảo Bribie trong vòng 48 giờ sau khi bị bắt. Khi nhận được, mỗi con tôm được quan hệ tình dục, cân nặng, gắn mắt và có một mảnh mô màng phổi được bảo quản để phân tích PCR. Mỗi bể chứa trưởng thành hình tròn 2 x 10.000 lít được thả với 32 con cái và 32 con đực. Các bể được đặt trong một căn phòng tối, có nắp đậy giảm ánh sáng, sử dụng một lớp cát 3 mm và được cung cấp nước nóng qua dòng nước biển và sục khí đủ để duy trì mức oxy hòa tan tối ưu. Cá bố mẹ được cho ăn nhiều loại thức ăn tự nhiên điển hình của những con được sử dụng trong trại sản xuất giống thương mại địa phương để thúc đẩy sự phong phú. Một mô pleepad bổ sung đã được lấy mẫu từ mỗi phụ nữ tại thời điểm nó bị cắt bỏ và sinh sản.

Trứng sinh sản từ con cái được nuôi trong bể đến giai đoạn sau khai báo 20 (PL20) bằng cách sử dụng quy trình sản xuất giống tiêu chuẩn. Các hồ PL20 có nguồn gốc từ một nhóm gồm ba con cái hoặc một nhóm bốn con cái, mỗi bể được thả vào hai ao nuôi nhốt bằng nhựa và lưới che chim (sâu 40 m × 40 m × 2 m; 0,16 ha) và được nuôi sử dụng tiêu chuẩn thực hành thương mại địa phương. Các nhóm 144 con tôm từ mỗi trong bốn ao được lấy mẫu đều đặn theo chu kỳ phát triển để ghi lại trọng lượng và giới tính và để bảo tồn mô pleepad và / hoặc mô lympho (LO) để phân tích PCR tiếp theo. Tôm được thu hoạch bằng lưới và cuối cùng là thoát nước ao trong khoảng 150 đến 170 ngày nuôi (DOC) để xác định năng suất ao cuối cùng và tỷ lệ sống của tôm.

Pic 1. Quan điểm phát triển tôm ấu trùng được sản xuất cho nghiên cứu ao.

Năng suất ao và sự khác biệt sống sót

Trọng lượng 144 P. monodon được thu thập ngẫu nhiên từ mỗi ao nghiên cứu 4 x 0,16 ha được theo dõi đều đặn trong suốt quá trình phát triển. Từ 120 ngày nuôi (DOC) trở đi, trọng lượng thấp hơn đáng kể trong số tôm từ đoàn đã thả vào 2 trong 4 ao (tức là ao 1 và 4; Hình 1). Hình dạng chung của tôm thu thập từ hai ao này từ thời điểm này trở đi cũng giảm rõ rệt so với tôm được thu thập từ ao 2 và 3.

Hình 1. (A) Log10 có nghĩa là các bản sao DNA IHHNV / μg TNA được xác định bằng qPCR thời gian thực bằng cách sử dụng mô pleepad từ 48 trong số 144 con tôm được lấy mẫu từ mỗi bốn ao tại mỗi thời điểm, ngoại trừ tại 140 DOC khi cơ quan bạch huyết mô từ 30 con tôm đã được thử nghiệm. (B) Tỷ lệ (%) tại đó IHHNV được phát hiện bởi qPCR thời gian thực trong 48 con tôm được kiểm tra từ mỗi ao tại mỗi thời điểm, ngoại trừ 140 DOC khi tỷ lệ lưu hành chỉ được đánh giá cho 30 con tôm. (C) Trọng lượng tôm trung bình ± SE (gram) của 144 con tôm / ao được lấy mẫu tăng dần trong suốt quá trình nuôi, ngoại trừ ở 140 DOC khi chỉ có 30 con tôm / ao. Các mức ý nghĩa thống kê (* P <.05; ** P <.001) được xác định bằng cách sử dụng trọng lượng trung bình biến đổi logarit của tôm từ các ao cao IHHNV 1 và 4 kết hợp và IHHNV-ao thấp 2 và 3 kết hợp tại mỗi thời điểm lấy mẫu điểm.

Tôm được thu hoạch dần dần trong khoảng thời gian hai tuần bắt đầu từ 155 DOC. Để định lượng sự khác biệt ở quy mô thương mại, năng suất thu hoạch cuối cùng nhận ra trong mỗi ao nghiên cứu 0,16 ha đã được xác định và ngoại suy (x 6,25) cho ao thương mại 1 ha điển hình. Sử dụng những dữ liệu này, sản lượng từ Ao 2 và 3 (lần lượt là 12,3 và 14,2 tấn) cao hơn 22% đến 58% so với sản lượng từ ao 1 và 4 (lần lượt là 9.0 và 10.1 tấn) (Bảng 1). Dựa trên trọng lượng trung bình được xác định cho tôm thu hoạch, tỷ lệ sống ước tính ở ao 2 và 3 (lần lượt là 95,9% và 99,8%) cũng cao hơn 13% đến 25% so với ao 1 và 4 (tương ứng 79,9% và 84,5%) . Do tốc độ tăng trưởng và tỷ lệ sống cao hơn của nhóm tôm được nuôi trong ao 2 và 3,

 

Bảng 1. Số liệu sản xuất ao cho Penaeus monodon trong nghiên cứu.
* ngoại suy từ ao 0,16 ha (tức là tổng trọng lượng / 0,16)

Sử dụng số lượng ngoại suy, ao 2 và 3 đã sản xuất chung 7,44 tấn (av = 3,72 tấn / ha) tôm mà ao 1 và 4. Vì những con tôm này có trọng lượng thu hoạch trung bình dẫn đến 35 đến 38 miếng / kg với bán buôn nấu chín điển hình giá trị ở Úc khoảng $ 18 AUD / kg, năng suất bổ sung 3,72 tấn / ha này sẽ cải thiện tổng giá trị của cây trồng (không tính đến chi phí thức ăn, nấu ăn và phụ trợ bổ sung) khoảng 67.000 AUD mỗi ao 1 ha.

Chênh lệch tải nhiễm IHHNV

Thử nghiệm qPCR thời gian thực của TaqMan đã xác định sự vắng mặt của virut liên quan đến mang (GAV; kiểu gen virut đầu vàng 2 (YHV2)) hoặc kiểu gen virut đầu vàng 7 (YHV7) trong cá bố mẹ và các tổ tiên của chúng được nuôi trong bốn ao. Do đó, thử nghiệm tương tự đã được thực hiện để xác định xem liệu nhiễm IHHNV có thể là nguyên nhân làm giảm hiệu suất tăng trưởng của đoàn hệ thống nuôi tôm trong ao 1 và 4 hay không.

Lượng TNA được chuẩn hóa đã được kiểm tra bằng phương pháp PCR định lượng thời gian thực (q) của TaqMan để so sánh trực tiếp tải DNA IHHNV (như một thước đo thực tế  về tải / mức độ nghiêm trọng) trên các mẫu. Dữ liệu qPCR trên mô pleepad được lấy mẫu tại thời điểm tôm bố mẹ được nhận từ Bắc Queensland đã xác định tải IHHNV cực thấp trong năm và tải trọng cao hơn đáng kể ở một phụ nữ từ mỗi nhóm đóng góp vào thế hệ 1 và 4 hoặc ao 2 và 3. Tải cao nhất (6,71 x 10  Bản sao DNA IHHNV / TNAg TNA) đã được phát hiện ở 1 trong 3 con cái đã đóng góp con cháu vào ao 1 và 4.

Tải IHHNV thường tăng trong khoảng thời gian ~ 6 tuần đã trưởng thành, tròng mắt bị bong ra và sinh sản. Tuy nhiên, tải trọng tăng lên mức cao nhất trong ba con cái đóng góp thế hệ 1 và 4 con cái, với con cái cao nhất cao hơn 100 lần so với con số cao nhất trong bốn con cái đóng góp ao 2 và 3 con cháu. Thử nghiệm các nhóm trứng xác định tải IHHNV là cao nhất và cao hơn> 100 lần so với trứng của bất kỳ con cái nào khác, trong bể được thu thập từ con cái được xác định có tải IHHNV cao nhất khi được lấy mẫu cả khi đến và vào thời điểm nó sinh sản .

QPCR thời gian thực cũng được sử dụng để phát hiện và định lượng tải IHHNV trong pleepads từ 48 trong số 142 đến 144 cá thể tôm được thu thập và cân từ bốn ao tại 51, 86, 120 và 155 DOC cũng như từ 30 con tôm được lấy mẫu từ mỗi ao ở 140 DOC (Hình 1). Trong số những con tôm được thử nghiệm tại các thời điểm này từ ao 1 và 4, IHHNV đã được phát hiện với tỷ lệ lưu hành 100% từ 86 DOC trở đi. Ngược lại, trong số những con tôm được thử nghiệm từ ao 2 và 3 cùng một lúc, tỷ lệ nhiễm IHHNV thấp hơn ở thời điểm nuôi trước đó và chỉ đạt 100% vào thời điểm lấy mẫu (140-155 DOC) rất muộn trong quá trình nuôi. Tải trọng IHHNV trung bình cao hơn 100 lần ở ao 1 và 4 so với ao 2 và 3 tại thời điểm lấy mẫu ban đầu (51 DOC) và cao hơn 1000 lần ở bốn thời điểm lấy mẫu sau (Hình. 1).

Kết luận và hiệu quả

Nhiễm IHHNV thường được chứng kiến ​​là tương đối lành tính trong sản xuất nuôi tôm sú ( Penaeus monodon ). Mặc dù tiền đề chung này, được mô tả ở đây là những phát hiện cho thấy nhiễm IHHNV ở loài này cần được xem xét nghiêm túc hơn so với suy nghĩ trước đây. Trong những trường hợp tôm bị vướng vào gánh nặng nhiễm bệnh rất lớn kéo dài, IHHNV đã được tìm thấy có khả năng ảnh hưởng sâu sắc đến tăng trưởng, sức khỏe nói chung, năng suất sống sót và thu hoạch ao. Với lượng tử tổn thất năng suất ước tính trị giá 67.000 đô la Úc cho một ao thương mại rộng 1 ha, các biện pháp ngăn ngừa nhiễm trùng như vậy phát sinh là đáng để xem xét.

Liên quan đến những biện pháp can thiệp nào có thể mang lại phương tiện hiệu quả nhất để hạn chế nhiễm trùng tải trọng cao xảy ra, lưu ý rằng một trong bảy huyết thống nữ được sử dụng có tải IHHNV cao nhất hiện có khi bị bắt từ tự nhiên cũng có tải trọng cao nhất tại những lần nó bị mỏi mắt và sinh sản.

Hơn nữa, trứng được sản xuất từ ​​nữ này sở hữu IHHNV ở mức tải (2,3 x 10 Các bản sao DNA IHHNV / TNAg TNA) ồ ạt hơn bất kỳ ai trong số sáu người phụ nữ khác (30 đến 1030 bản sao DNA IHHNV / Tggg TNA), bất kể thực tế là tải IHHNV cũng tăng vừa phải ở những người phụ nữ này trong thời gian sáu tuần giữa khi chúng được nhận và sinh sản. Do đó, trong trường hợp IHHNV rất phổ biến ở cá bố mẹ hoang dã bị bắt để sử dụng trong trại sản xuất giống và khả năng tồn tại để định lượng mức độ nghiêm trọng của nhiễm trùng bằng qPCR, nên sử dụng thử nghiệm này như một phương tiện để xác định và loại bỏ những con cái có tải trọng cao như vậy trước khi chúng được điều hòa và sinh sản. Việc sàng lọc qPCR của các bể trứng để xác định và loại bỏ bất kỳ loại IHHNV nào có tải trọng cao cũng cần được xem xét trong các trường hợp như vậy để đảm bảo rằng chỉ có giống cây trồng không có IHHNV hoặc không có IHHNV.

Cơ hội tồn tại cho các chiến lược can thiệp RNA (RNAi) để giảm tải các bệnh nhiễm virus đã có từ trước và do đó xu hướng nhiễm trùng sẽ được truyền theo chiều dọc cho con cháu. Tuy nhiên, công nghệ này vẫn chưa phát triển đến mức cung cấp một giải pháp ngắn hạn, ngoại trừ có thể hỗ trợ trong việc loại bỏ nhiễm trùng tải thấp từ các dòng giống P. monodon thuần hóa . Các dòng nhân giống P.  SPF không có mầm bệnh cụ thể như vậy sẽ cung cấp giải pháp, với các dòng cũng được chọn để tăng cường khả năng kháng / dung nạp IHHNV cung cấp một giải pháp thậm chí lý tưởng hơn.

Tuy nhiên, tại các quốc gia như Úc, nơi các quy định kiểm dịch nghiêm cấm nhập khẩu tôm sống cho mục đích nuôi trồng thủy sản, những nỗ lực tạo ra và duy trì các dòng giống như vậy đã không thể phá vỡ chu kỳ phụ thuộc vào tôm bố mẹ hoang dã. Mặc dù có một số tiến bộ, cho đến khi các dòng SPF như vậy có thể được thiết lập hoặc có được, lựa chọn dựa trên sàng lọc sẽ vẫn là phương tiện duy nhất ngăn IHHNV gây ra tác động sản xuất đối với P. monodon  được nuôi ở Úc và các nơi khác có cùng các yếu tố tương tự.

 

GIỚI THIỆU SẢN PHẨM:

MEN TIÊU HÓA NGỪA VÀ TRỊ PHÂN TRẮNG

Công dụng:

  • Làm to đường ruột trong 3 ngày, trị đứt khúc ruột, phân lỏng, ngừa phân trắng, giúp tôm cá tăng trưởng nhanh
  • Giúp tôm hấp thu tốt thức ăn, giảm hệ số FCR

Cách dùng:

  • 5g/1kg thức ăn trong quá trình nuôi
  • Tôm đứt khúc ruột: 10g/1kg thức ăn
  • Hòa men vào nước, trộn đều vào thức ăn. Để 15-20ph cho men ngấm vào thức ăn, rồi đem rải cho tôm ăn

Thông tin liên hệ: 09.333.333.61 hoặc truy cập qua facebook: Sinh học tôm vàng để biết thêm thông tin.

 Tag: Cách trị phân trắng trên tômgiúp tôm cá tăng trưởng nhanhgiúp tôm hấp thu tốt thức ănmen nong to đường ruộtmen tiêu hóa cho cámen tiêu hóa cho tômmen tiêu hóa giá rẽmen tiêu hóa giá tốtMen tiêu hoá trị phân trắng trên tômngừa phân trắngngừa phân trắng cho tômngừa phân trắng cho tôm thẻnong to đường ruộtPhòng bệnh phân trắng trên tômPro Mentăng trưởng nhanh cho tômtrị đường ruột cho tômtrị phân trắng cho thẻ

Tư vấn hợp tác chuyển giao công nghệ liên hệ: 09.333.333.61 

Quy trình nuôi tôm công nghệ cao SINH HỌC TÔM VÀNG tư vấn thiết kế và xây dựng mô hình nuôi tôm công nghệ cao đạt hiệu quả và tỉ lệ thành công 90% trọn vẹn niềm tin

THANH TÀI lược dịch
SHTV

Thông tin liên hệ: 09.333.333.61 hoặc truy cập qua facebook: Sinh học tôm vàng để biết thêm thông tin.

Tag:  

Tư vấn hợp tác chuyển giao công nghệ liên hệ: 09.333.333.61 Quy trình nuôi tôm công nghệ cao SINH HỌC TÔM VÀNG tư vấn thiết kế và xây dựng mô hình nuôi tôm công nghệ cao đạt hiệu quả và tỉ lệ thành công 90% trọn vẹn niềm tin.

Sinh Học Tôm Vàng